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PCR实验室在操作时应注意事项

  PCR检测微量感染因子时，容易因为污染的而导致各种问题，因此，进行PCR操作时，操作人员应该严格遵守一些操作规程，*大程度地降低可能出现的PCR污染或杜绝污染出现。

　　(1)划分操作区：

　　目前，普通PCR尚不能做到单人单管，实现完全闭管操作，但无论是否能够达到单人单管，均要求实验操作在三个不同的区域内进行，PCR的前处理和后处理要在不同的隔离区内进行：

　　①标本处理区，包括：扩增摸板制备;

　　②PCR扩增区，包括：反应液的配制和PCR扩增;

　　③产物分析区，凝胶电泳分析，产物拍照及重组克隆制备。

　　※各工作区要具有一定隔离，操作器材专用，要有一定方向性，如，标本制备→PCR扩增→产物分析→产物处理。

　　切记：产物分析区的产物及器材不要拿到其他两个工作区。

　　(2)分装试剂：

　　PCR扩增所需要的试剂均应在装有紫外灯的超净工作台或负压工作台配制和分装，所有的加样器和吸头需固定放于其中，不能用来吸取扩增后的DNA和其他来源DNA：

　　①PCR用水应为高压的双蒸水;

　　②引物和d-NTP用高压的双蒸水在无PCR扩增产物区配制;

　　③引物和d-NTP应分装储存，分装时应标明时间，以备发生污染时查找原因;

　　(3)实验操作注意事项：

　　尽管扩增序列的残留污染大部分是假阳性反应的原因，样品间的交叉污染也是原因之一。

　　因此：不仅要在进行扩增反应是谨慎认真，在样品的收集、抽提和扩增的所有环节都应该注意：

　　①戴一次性手套，若不小心溅上反应液，立即更换手套;

　　②使用一次性吸头，严禁与PCR产物分析室的吸头混用，吸头不要长时间暴露于空气中，避免气溶胶的污染;

　　③避免反应液飞溅，打开反应管时为避免此种情况，开盖前稍离心收集液体于管底。若不小心溅到手套或桌面上，应立刻更换手套并用稀酸擦拭桌面;

　　④操作多份样品时，制备反应混合液，先将dNTP、缓冲液、引物和酶混合好，然后分装，这样即可以减少操作，避免污染，又可以增加反应的精确度;

　　⑤*后加入反应模板，加入后盖紧反应管;

　　⑥操作时设立阴阳性对照和空白对照，即可验证PCR反应的可靠性，又可以协助判断扩增系统的可信性;

　　⑦尽可能用可替换或可高压处理的加样器，由于加样器*容易受产物气溶胶或标本DNA的污染，*好使用可替换或高压处理的加样器。如，没有这种特殊的加样器，至少PCR操作过程中加样器应该专用，不能交叉使用，尤其是PCR产物分析所用加样器不能拿到其它两个区;

　　⑧重复实验，验证结果，慎下结论。

　　PCR扩增重要标准

　　什么是PCR实验灵敏度?

　　灵敏度指的是PCR扩增反应能够检测到目的基因*小值。研究结果表明，影响PCR扩增效率的因素，如，模板的复杂程度与完整性、引物纯度及其与模板结合效率、反应温度、DNA聚合酶的热稳定性与扩增性能、反应缓冲液的离子组成(主要指：阳离子)、反应优化剂等，均决定PCR实验检测灵敏度。在*佳扩增条件下，常规PCR反应能够检测到pg(10～12g)数量级目的基因。对于一个特定的目的基因，模板与引物通常都是已经限定好的因素。因此，选择什么样的PCR反应体系(包括：DNA聚合酶与反应缓冲液等)就是研究者提高PCR实验灵敏度的关键因素了。

　　与实验室自配PCR扩增体系相比，东盛Taq Mix对反应缓冲液中的成分进行优化，并加入了适当比例的反应增强剂(PCR Enhancer)，提高DNA聚合酶热稳定性，显著降低模板二级结构对PCR扩增性能影响，使得DNA聚合酶处于*适活性状态，从而获得比自配体系更高检测灵敏度。即时反应体系中只有几个目的基因拷贝，也能轻松检测。

　　什么是PCR实验特异性?

　　特异性指的是在PCR扩增过程中，专一性扩增目的片段而非其他片段的性能。在PCR实验本身的灵敏度很高，且实验条件未充分优化的情况下，通常会在目的片段出现同时伴随有其他杂带，即，发生非特异性扩增现象。模板、引物性质及质量、反应条件控制等均会影响PCR扩增特异性。近年，研究结果表明，缓冲液品质(如，离子种类与组成，反应优化剂等)对保证PCR特异性扩增起着不可忽视的作用。一般缓冲液中调节氢键作用盐只有KCl，而东盛HSTMTaq Mix的缓冲体系通过反应优化剂以及KCl/(NH4)SO4盐离子体系平衡调节，显著提高PCR扩增特异性，降低背景。

　　PCR实验灵敏度与特异性是一对此长彼消特性，这也决定我们实验体系调节实际上就是需要找到适合实验灵敏度与特异性平衡点。由于PCR体系中的众多成分，使得组合较多，筛选工作繁杂。东盛基于灵敏度与特异性分别设计了PCR Mix和HS Taq Mix，帮您确定大平衡点，如果您需要更细致的平衡点，请选择相应的Mix Kit系列进行微调。